HOME > EDICIONES > Año 2004, Volumen 54 - Número 2
Trabajos de Investigación
Efectos de la incorporación en la dieta de pigmentos carotenoides, sobre el desarrollo gonadal y la madurez de los ovocitos en hembras de trucha arco iris (Onchorhynchus mykiss, Walbaum, 1972)
Genoveva Ingle de la Mora1, J. L. Arredondo-Figueroa2, Irene de los Ángeles Barriga-Sosa2, J. Bazán-Arias2 y J. Vernon-Carter3 Instituto Nacional de la Pesca, Dirección General de Investigación en Acuacultura, México1 - Planta Experimental de Producción Acuícola, Depto. de Hidrobiología, División de CBS, UAM Iztapalapa, México, D.F2 - Depto. Ingeniería y Procesos Hidráulicos, División de CBI, UAM Iztapalapa, México3
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RESUMEN Efectos de la incorporación en la dieta de pigmentos carotenoides, sobre el desarrollo gonadal y la madurez de los ovocitos en hembras de trucha arco iris (Onchorhynchus mykiss, Walbaum, 1972) Se utilizaron cuatro grupos experimentales con 60 hembras de trucha arco iris (Onchorhynchus mykiss) cada uno, con un peso promedio de 467 g, las cuales fueron sometidas a un ensayo aleatorio para comparar la eficiencia de cuatro dietas conteniendo diferentes concentraciones de pigmentos carotenoides y determinar sí la concentración y el origen del mismo presentaba una influencia sobre el desarrollo gonadal y la maduración de los ovocitos. La primera dieta fue una dieta control no pigmentada (C); la segunda contenía 100 mg kg-1 de Carofil Rosa (CR); la tercera y cuarta contenía 200 (CR200) y 250 (CR250) mg kg-1 de oleorresina saponificada de chile rojo (Capsicum annuum), respectivamente. Los resultados mostraron que existieron diferencias significativas (p £ 0.05) entre las dietas C y CR250 con respecto al índice gonadosomático (IGS), peso promedio de la gónada (PG) y el diámetro de los ovocitos (DO), presentando la última dieta los valores más altos de estos factores. Los tratamientos de CP y CR200 presentaron valores similares. Al final del experimento solamente se observó el 10% de ovocitos maduros en la dieta CR250.
Palabras clave: Oleorresina saponificada de chile rojo, pigmentos carotenoides, desarrollo gonadal, maduración de ovocitos, trucha arco iris.
SUMMARY Effects of the dietary incorporation of carotenoid pigments on gonad development and oocyte maturity in females of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum, 1972) Four groups of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) each with 60 females with an average body weight of 467 g were submitted to an aleatory assay in order to compare the efficiency of four diets containing different concentrations of carotenoid pigments, and to determine if pigment concentration and source had an influence on female gonad development and oocyte maturity. The first diet was the non-pigmented control (C). The second diet contained 100 mg kg-1 of Carophyll Pink (CR). The third and fourth diets contained 200 (RC200) and 250 (RC250) mg kg-1 of saponified red chili oleoresin, respectively. The results indicated significant differences (p £ 0.05) between C and RC250, with respect to the gonado-somatic index (IGS), average gonad weight (PG) and average diameter of oocyte (DO), with CR250 showing higher IGS, PG and DO values. Treatments CR and CR200 presented similar values. At the end of the experimental period, only 10% of oocytes were mature in the RC250 diet.
Key words: Saponified red chili oleoresin, carotenoid pigments, gonad development, oocyte maturity, rainbow trout.
INTRODUCCION
Durante los últimos años, se ha incrementado notablemente el uso de pigmentos
carotenoides en el cultivo de la trucha arco iris y el salmón, debido a que
estos producen un atractivo color en el músculo, que incrementa su aceptación
por los consumidores y resulta en un incremento de hasta el 30% de su valor económico.
Los Salmónidos no son capaces de sintetizar de novo estos pigmentos, por lo que
resulta necesario incorporarlos en el alimento balanceado durante su proceso de
cultivo.
La depositación de los pigmentos carotenoides
en los Salmónidos no es constante a lo largo de su ciclo de vida, ya que varia
de acuerdo a la edad, la época del año y el estado de madurez (1,2). Los
pigmentos agregados en las dietas balanceadas, no necesariamente son fijados en
el tejido muscular del pez, sino que también se concentran a través de
diferentes rutas metabólicas en otros tejidos, especialmente en la piel y en
las gónadas (3, 4). La maduración sexual de los peces Salmónidos, esta
asociada a un periodo inicial de rápido crecimiento, seguido por un intenso
desarrollo de las gónadas, un descenso en la tasa de crecimiento y una
disminución marcada en el consumo de alimento previo a la reproducción (5,6).
Durante la madurez sexual, las truchas muestran bajas concentraciones de
carotenoides en el tejido muscular, debido a que éstos pigmentos se distribuyen
a otros órganos y tejidos, así por ejemplo, la astaxantina se mueve del tejido
muscular y se acumula en las gónadas en el caso de las hembras y en la piel en
el caso de los machos (7- 10). Se ha visto que durante la maduración sexual,
cantidades considerables de pigmentos carotenoides son transportados a los
ovocitos en donde es posible registrar hasta el 18% del total de carotenoides,
que es similar a la encontrada en el tejido muscular (2). Se ha sugerido que la
derivación de los carotenoides a las gónadas, esta relacionado con los
procesos de maduración y fertilización de los óvulos maduros. De acuerdo con
esta información, los pigmentos carotenoides juegan un papel destacado en los
procesos de maduración de las gónadas y de los ovocitos, así como en el
desarrollo embrionario y la sobrevivencia de los alevines en los Salmónidos en
general.
En relación a los pigmentos naturales como
aquellos obtenidos del Chile rojo (Capsicum annuum), actualmente no existen
estudios acerca de sus efectos sobre el desarrollo gonadal en las especies de
Salmónidos y mucho menos de las vías metabólicas utilizadas por la capsantina
(el principal pigmento carotenoide del Chile rojo), aunque se puede asumir, que
probablemente las vías metabólicas son similares a la astaxantina sintética,
aunque su efecto sobre el desarrollo gonadal y en particular sobre los ovocitos
no esta bien definido.
El objetivo del presente trabajo, consistió
en investigar la influencia de los pigmentos carotenoides como la astaxantina
sintética y la capsantina incluida en la oleorresina saponificada del Chile
rojo (Capsicum annuum), sobre el desarrollo de las gónadas y la maduración de
los ovocitos, en hembras de trucha arco iris de primera reproducción, bajo
condiciones de cultivo.
MATERIALES Y METODOS
Preparación de las dietas
Las dietas experimentales, fueron asignadas de manera aleatoria y consistieron
en una dieta control (C) sin ningún pigmento, la dieta de Carofil rosa (CR),
que incluyó el pigmento sintético Carofil Rosa y dos dietas con extracto de
oleorresina saponificada de Chile rojo (Capsicum annuum) (CR200 y CR250), (Tabla
1). Las dietas experimentales se prepararon utilizando una dieta basal para
engorde de trucha arco iris, elaborada por la Empresa Alimentos Balanceados
Almazán (bajo Licencia de Silver Cup, USA), la cual contenía 40.6 ± 0.12% de
proteína cruda, 18.8 ± 0.02% de lípidos y 1.1 ± 0.11% de fibra cruda. A esta
dieta se le añadió el aceite de pescado y los pigmento carotenoides.
Posteriormente, se colocó en un molino para obtener "pellets" de 8 mm
de diámetro, los que fueron secados durante 12 horas a 45 °
C y después de esto, se mantuvieron almacenados en bolsas plásticas negras en
refrigeración a 4 ° C hasta su uso.
TABLA 1
Tipos y concentración de pigmentos utilizados en las dietas experimentales
|
|
Dietas
|
Pigmentos
|
Concentración (miligramos por kilogramo de alimento)
|
|
|
C
|
Sin pigmento
|
5
|
|
CR (1)
|
Carofil rosa
|
100
|
|
CR200 (2)
|
Extracto de oleorresina saponificada de
Chile rojo
|
200
|
|
CR250 (2)
|
Extracto de oleorresina saponificada de
Chile rojo
|
250
|
|
|
Dietas: Control (C); Carofil rosa
(CR); CR200 (Chile rojo 200); CR250 (Chile rojo 250).
(1) Carofil rosa: contiene 8% de astaxantina (Hoffman-La Roche,
Basel, Suiza).
(2) Florafil R-3 líquido (Prodemex, SA de CV, Sonora, México).
Extracto saponificado de harina de Chile rojo (Capsicum annuum),
emulsificado, estabilizado con antioxidantes y dispersado en agua.
Partición relativa por cromatografía: Total de dihidroxipigmentos
rojos 40-45%; Dihidroxicapsantina 35-45%; Dihidroxicapsorubina 0.5-2%;
Dihidroxiluteina 1-8%; Dihidroxizeaxantina 1-8%; Total de carotenoides
10-20%.
|
Procedimiento experimental
Se utilizaron doscientos cuarenta hembras de trucha arco iris con un peso
promedio de 476 ± 63.5 g y nueve meses de edad, las cuales fueron separadas en
cuatro grupos experimentales de 60 peces cada uno. Las truchas fueron
introducidas en estanques circulares de 4,000 litros cada uno, conectados a un
sistema cerrado de recirculación y reacondicionamiento de agua. Las truchas
fueron climatizadas por un periodo de 20 días previo al experimento, con el
objetivo de estandarizar el peso total promedio del grupo y el experimento tuvo
una duración de 45 días. Las truchas fueron alimentadas dos veces al día, con
el 15% de su peso vivo. La biomasa para cada grupo experimental fue registrada
cada 15 días y sirvió para ajustar la entrega de las cinco dietas.
Se registraron los siguientes parámetros de calidad del
agua: temperatura del agua y concentración de oxígeno disuelto, mediante un oxímetro
YSI modelo 57 (Yellow Springs Instrument Company, Yellow Spring, Ohio, USA) y pH
con un potenciómetro digital marca Orion, modelo 410A. Nitrógeno amoniacal
total (NAT), amoniaco (N-NH3), nitrito (N-NO2-)
y nitrato (N-NO3-), con un equipo Hach 2000/DR (Hach
Company, Loveland, Co. USA).
Determinación de los estados de maduración de las gónadas
y los ovocitos
Cada 15 días, se sacrificaron aleatoriamente 20 peces de cada grupo y se
registró la longitud total en centímetros (LT), peso total en gramos (PT) y el
peso de la gónada en gramos (PG). El índice gonadosomático (IGS) fue estimado
de acuerdo con el criterio de Rossemblum y colaboradores (11), mediante la fórmula
siguiente:
IGS = (Pg/Pt) * 100
Donde:
IGS = Índice gonadosomático del pez.
Pg = Peso de las gónadas (g).
Pt = Peso total (g).
Ocho pares de gónadas de cada grupo experimental fueron
seleccionadas aleatoriamente y fijadas en formol al 10%. De cada gónada se
tomaron 100 ovocitos, los cuales se observaron al microscopio óptico (Kart
Zeiss Company) y se midieron con oculares micrométricos de 10x, 16x, 40x y
100x, y se obtuvo el diámetro promedio de los ovocitos (DO). Para determinar el
grado de desarrollo de los ovocitos, éstos fueron sumergidos en una solución
aclaradora (12) y se clasificaron de acuerdo a la escala de madurez de Tyler y
colaboradores (5), quienes consideran cinco clases de talla de acuerdo a su diámetro:
I, formada por ovocitos menores de 0.4 mm; II, de 0.4 a 0.59 mm; III, de 0.6 a
0.79 mm; IV, 0.8 a 0.99 mm y V, de 1.0 a 1.2 mm. Los ovocitos mayores de este diámetro
se consideran vitelogénicos y los folículos maduros alcanzan un diámetro
promedio de 5 mm.
Análisis estadístico
Para determinar si existían diferencias significativas entre los grupos
experimentales y los tiempos, con respecto al índice gonasomático (IGS), el
peso promedio de las gónadas (PG) y el diámetro de los ovocitos (DO), se aplicó
un Análisis de Varianza de una sola vía y una prueba a posteriori de Tuckey
HSD, por medio del Programa Statistica (Statsoft Inc., OK, USA).
RESULTADOS Y DISCUSION
Los parámetros fisicoquímicos registrados a lo largo del periodo experimental
se mantuvieron constantes (Tabla 2) y sus promedios indican que las condiciones
experimentales fueron adecuadas, permitiendo una buena sobrevivencia y un
adecuado crecimiento de las truchas, resultados que están acordes con los
reportados por Klontz (13) para el cultivo de la trucha arco iris.
TABLA 2
Valores promedios de los parámetros fisicoquímicos registrados
en los estanques de producción a lo largo del experimento
|
|
Dietas
|
O.D.
(mg/L)
|
Amoniaco
(NH3)
(mg/L)
|
Nitratos
(NO3-)
(mg/L)
|
Nitritos
(NO2-)
(mg/L)
|
pH
|
Temperatura
(ºC )
|
|
|
C
|
7.4
|
0.589
|
5.36
|
0.1712
|
8.5
|
19.0
|
|
CR
|
7.5
|
0.573
|
5.70
|
0.3000
|
8.6
|
19.0
|
|
CR200
|
7.6
|
0.651
|
5.83
|
0.1942
|
8.6
|
19.0
|
|
CR250
|
7.2
|
0.690
|
5.80
|
0.0656
|
8.6
|
19.0
|
|
|
O.D. = Oxígeno disuelto.
|
Durante los 45 días experimentales, no se registró
mortalidad y el incremento de peso diario fue satisfactorio, siendo de 5.6 y 5.0
gramos /día en promedio para las dietas pigmentadas y control respectivamente.
Estos datos confirman que la calidad del agua en el sistema cerrado de
recirculación y reacondicionamiento, fue apropiada. Además, la dieta cubrió
adecuadamente los requerimientos nutricionales. Únicamente el amoniaco (N-NH3)
presentó concentraciones altas, que son considerados dentro del rango subletal
para la trucha arco iris (> 0.05 mg/L) Klontz (13); no obstante ello, las
hembras de trucha arco iris no mostraron síntomas de intoxicación, ni
exhibieron una conducta anormal, ni tampoco presentaron mortalidad.
Los valores promedios del índice gonadosomático (IGS)
registrados en la dieta control (C), no mostraron diferencias significativas (p ³
0.05) con respecto a los tiempos de muestreo, mientras que las dietas CR y
CR200, sí mostraron diferencias (p £ 0.05) entre
los 15 y 30 días, pero no entre los 30 y 45 días. En cambio, la dieta CR250,
registró diferencias (p £ 0.05) en los tres
periodos de muestreo (Tabla 3).
TABLA 3
Indice gonadosomático (IGS) de los
tratamientos durante los tres periodos
|
|
Tratamiento/Tiempo
|
C
|
CR
|
CR200
|
CR250
|
|
|
15 días
|
1.19 a
|
1.24 a
|
1.29 a
|
1.23 a
|
|
30 días
|
1.69 a
|
2.46 b
|
2.40 b
|
2.58 b
|
|
45 días
|
1.95 a
|
3.69 bc
|
3.65 bc
|
3.99 bc
|
|
|
a-c: Las letras diferentes en las columnas, indican
diferencias significativas (p £ 0.05) entre
los valores promedio y los tiempos de análisis.
|
El peso promedio de las gónadas (PG), en todas las dietas
presentaron diferencias (p £ 0.05) en relación al
tiempo de muestreo, excepto a los 15 días donde no hubo diferencias
significativas entre las dietas; a los 30 días la dieta C fue
significativamente menor a las otras dietas y a los 45 días, la dieta C fue
también menor a las otras dietas. Las dietas CR y CR200 no presentaron
diferencias significativas entre ellas a los 30 y a los 45 días. La dieta
CR250, fue la que presentó los mayores valores promedios del PG siendo
significativamente mayor a las restantes dietas (Tabla 4).
TABLA 4
Peso promedio de las gónadas (PG), entre los tratamientos y los tiempos
|
|
Tratamientos/Tiempo
|
C
|
CR
|
CR200
|
CR250
|
|
|
15 días
|
0.18 a,A
|
0.19 a,A
|
0.21 a,A
|
0.46 a,A
|
|
30 días
|
0.48 b,A
|
3.69 b,B
|
4.99 b,B
|
6.33 b,BC
|
|
45 días
|
2.04 c,A
|
6.21 c,B
|
7.42 c,B
|
11.97 c,C
|
|
|
a-c: Letras diferentes en las
columnas, indican diferencias significativas (p £
0.05) entre los tiempos.
A-C: Letras diferentes en las filas, indican diferencias (p £
0.05) entre las dietas.
|
El diámetro promedio de los ovocitos (DO), mostraron que la
única dieta que no presentó diferencias significativas en los tiempos de
muestreo fue la dieta control y su fase de desarrollo no pasó de I. Las demás
dietas, sí presentaron diferencias significativas (p £
0.05), exhibiendo diferentes fases de desarrollo de los ovocitos en el
transcurso del ensayo. En particular, la dieta CR250 presentó los valores
promedios más altos de DO y cambios en las fases de desarrollo de los ovocitos
en los tres tiempos. A los 15 días del experimento, no se observaron
diferencias significativas (p ³ 0.05) entre las
distintas dietas y los cambios se produjeron entre los 30 y 45 días del
experimento respectivamente, siendo más evidentes en este último periodo
(Tabla 5).
TABLA 5
Diámetro promedio de los ovocitos (DO) y su fase de desarrollo,
registrada en los tres periodos en las distintas dietas (mm)
|
|
Tratamientos/Tiempo
|
C
|
CR
|
CR200
|
CR250
|
|
15 días
|
I 0.19 a, A
|
I 0.22 a, A
|
I 0.21 a, A
|
I 0.22 a, A
|
|
30 días
|
I 0.26 a, A
|
II 0.46 b, B
|
II 0.60 b, B
|
III 0.68 b, BC
|
|
45 días
|
I 0.60 a, A
|
V 1.95 c, B
|
V 1.86 c, B
|
V 2.89 c, C
|
|
|
a-c: Letras diferentes en las
columnas, indican diferencias significativas (p £
0.05) entre los tiempos.
A-C: Letras diferentes en las filas, indican diferencias significativas
(p £ 0.05) entre las dietas.
|
El análisis morfológico de los ovocitos de las diferentes
dietas, mostró a los 15 días un desarrollo homogéneo en cuanto a su diámetro
y estructura interna, exhibiendo un proceso previtelogénico, con un núcleo
grande y central que ocupaba la mayoría del espacio interno. Después de los 30
días, los ovocitos mostraron un considerable incremento en tamaño en las
dietas CR, CR200 y CR250. En este periodo, los ovocitos presentaron vesículas
vitelinas en la mayor parte del citoplasma, un núcleo esférico con varios
nucleolos en la periferia. Hacia el final de la vitelogénesis tardía, el núcleo
presentó una forma oval (Figura 1).
FIGURA 1
A) Ovocitos (O) en las fases I, II y III (F 0.2 a
0.6 mm).
B) Ovocito en la fase V (F 2.9 mm), que
muestran un vitelogénesis tardía, con una gran cantidad
de vesículas vitelinas (Vv) y un núcleo oval (N)


A los 45 días, las gónadas presentaron ovocitos bien
zonificados, con diferentes diámetros y estados de desarrollo. Los ovocitos en
la parte central de la gónada mostraron diámetros más grandes y un mayor
desarrollo. Se observaron diferencias entre las dietas C y CR250. La primera
mostró el 97% de los ovocitos con diámetros reducidos y sin evidencia de vesículas
vitelinas. En contraste, en la última dieta el 10% de los ovocitos mostró
evidencias de una vesícula germinal desplazada hacia la periferia, lo que
significó la presencia de folículos totalmente maduros. Las dietas CR y CR200,
mostraron características similares, presentando ovocitos de un mayor tamaño,
con grandes cantidades de vesículas vitelinas, aunque la vesícula germinal se
mantuvo en una posición central.
Los resultados del IGS, PG y DO, señalan que el crecimiento
de las gónadas a lo largo del experimento fue diferente en cada tratamiento y
que los efectos de los pigmentos astaxantina y el extracto de la oleorresina
saponificada de Chile rojo, fueron evidentes sobre el desarrollo de las gónadas.
Debido a que no se observaron diferencias significativas (p ³
0.05) entre la ganancia de peso diario en los tratamientos, las diferencias
observadas en el desarrollo gonadal no pueden ser atribuidas a la dieta. En este
sentido, se estima que las diferencias exhibidas por estos indicadores son
debidas principalmente a la concentración y al origen de los pigmentos
carotenoides incorporados en la dieta. El mayor desarrollo de las gónadas y de
los ovocitos, fue observado en la dieta CR250 y el más bajo en la dieta
control.
Los resultados obtenidos en este trabajo, confirman que los
pigmentos carotenoides sintéticos y naturales, fueron redistribuidos y
acumulados durante el desarrollo de las gónadas, siendo transportados por la
sangre y acumuladas en las gónadas (4-10,14). A pesar del grado de desarrollo
alcanzado por los ovocitos en la dieta CR250, el 90% de ellos fueron inmaduros,
lo cual pudo deberse a que las hembra utilizadas en este experimento, todavía
no alcanzaban su madurez sexual ya que la temperatura del agua a lo largo del
experimento fue en promedio de 19 ºC. Generalmente, las hembras de trucha arco
iris alcanzan su primera madurez sexual al año o a los dos años de edad y la
temperatura óptima del agua para la reproducción fluctúa entre los 5.5 a 8 ºC
(15). En nuestro caso particular, estas dos condiciones no se cumplieron. Sin
embargo, la influencia directa de los pigmentos utilizados en este experimento
sobre la maduración de las gónadas fue evidente. Hasta el momento, la única
información disponible sobre el efecto de los pigmentos sobre la maduración de
las gónadas, es mediante el uso de pigmentos sintéticos tales como la
astaxantina y cantaxantina (16-19) y queda aún mucho que aprender, sobre los
efectos en la maduración gonadal de los pigmentos naturales como la capsantina,
que es el componente más importante de extracto de oleorresina saponificada de
Chile rojo (Capsicum annuum).
La evidente relación lineal, encontrada en este estudio
entre los pigmentos carotenoides y el desarrollo de las gónadas y los ovocitos,
indica el papel fundamental que representan éstos durante el proceso de
desarrollo gonadal, sin embargo, es necesario realizar investigaciones más
detalladas, que permitan conocer más a fondo los mecanismos de transporte y las
vías metabólicas de la capsantina, así como encontrar la concentración óptima
del pigmento para promover el desarrollo gonadal de las hembras de trucha arco
iris. Este último aspecto, es de importancia práctica, ya que permitiría
mejorar la producción masiva de alevines y crías en las granjas productoras de
trucha arco iris, con lo cual se mejoraría la rentabilidad económica.
AGRADECIMIENTOS
Este trabajo forma parte de la tesis Doctoral del primer
autor, en el Programa de Doctorado en Ciencias Biológicas, de la Universidad
Autónoma Metropolitana Iztapalapa. La parte experimental del mismo fue
realizada gracias al apoyo económico de la Empresa Productos Deshidratados de México,
S.C. y del Consejo Divisional de la División de CBS, de la UAM Iztapalapa.
Deseamos expresar nuestro agradecimiento a los alumnos de la Licenciatura en
Ingeniería Bioquímica Diana F. Rodríguez Hernández, Tania A. Romero Hernández
y a los alumnos de la Licenciatura en Hidrobiología Felicitas Sosa Lima y
Alejandro Zugasti Cruz, por el apoyo que nos brindaron para la realización de
este experimento.
REFERENCIAS
-
Choubert G. Pigments carotenoids et reproduction des
poisons. Bull Fr Peche Piscic 1986;300: 25-32.
-
Bjerken B, Storebakken T, Liaaen-Jensen S. Pigmentation
of rainbow trout from start feeding to sexual maturation. Aquaculture
1992;108: 333-346.
-
Choubert G, Blanc J, M. Dynamics of dietary
canthaxanthin utilization in sexually maturing female rainbow trout (Salmo
gairdneri Rich.) compared to triploids. Aquaculture 1989; 83: 359-366.
-
Torrisen O, J. Pigmentation of salmonids: interactions
of astaxanthin and canthaxanthin on pigment depositation in rainbow trout.
Aquaculture 1989; 79: 363-374.
-
Tyler C, R, Sumpter J, P, Campbell P, M. Uptake of
vitellogenin into oocytes during early vitellogenic development in rainbow
trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). J Fish Biol 1991;38: 681-689.
-
Tyler C, R, Pottinger T, G, Santos E, Sumpter J, P,
Price S, A, Brooks S, Magler, J, J. Mechanism controlling egg size and number
in the rainbow trout. Biol. of Reprod. 1996;54: 8-15.
-
Steven D, M. Studies on animal carotenoids. II.
Carotenoids in the reproductive cycle of the brown trout. J Exp Biol 1949;26:
295-303.
-
Crozier G, F. Tissue carotenoids in prespawning and
spawning sockeye Salmon (Oncorhynchus nerka). J Fish Res Board Can 1970;27:
973-975.
-
Kitahara T. Behaviour of carotenoids in the chum salmon
(Oncorhynchus keta) during anadromous migration. Comp Biochem Physiol
1983;76B: 97-101.
-
Ando A, Gjerde B, Roald S, O. Biological, chemical and
organoleptic changes during maturation of farmed Atlantic salmon, Salmo salar.
Aquaculture 1986;53: 7-20.
-
Rossemblum M, Pudney J, Callard I. Gonadal morphology
enzyme histochemistry and plasma steroid levels during the annual reproductive
cycle of male and female brown billhead catfish Ictalurus nebulosus Laseuer. J
Fish Biol 1987;31: 325-341.
-
Stoeckel J, N, Richard J, N. Comparison of methods for
viewing the germinal vesicle in fish oocytes. The Progressive Fish-Culturist
1992;54: 115-118.
-
Klontz G, W. Fish for the future: Concepts and methods
of intensive aquaculture. College of Forestry, Wildlife and Range Sciences,
Idaho Forest, Wildlife and Range Experiment Station. University of Idaho, USA,
1991.
-
Shnarevich I, D, Sakhnenko E, G. Dynamics of
carotenoids in tissues and organs of fish relative to the sexual cycle.
Gihidrobiol. Zh. 1971;7: 90-93.
-
Estay F, Díaz N, F, Neira R, Fernández X. Analysis of
reproductive performance of rainbow trout in a hatchery in Chile. The Progr
Fish-Cult 1994;56: 244-249.
-
No H, Storebakken K, T. Pigmentation of rainbow trout
with astaxanthin and canthaxanthin in freshwater and saltwater. Aquaculture
1992;101: 123-134.
-
Al-Khalifa S, Simpson K, L. Metabolism of astaxanthin
in the rainbow trout (Salmo gairdneri). Comp Biochem Physiol 1988; 91 B:
563-68.
-
Guillou A, Choubert G, Storebakken T, De la Noüe J.
Bioconversion pathway of astaxanthin into retinol in mature rainbow trout
(Salmo gairdneri, Rich.). Comp Biochem Physiol 1989;94B: 481-485.
-
No H, Storebakken K, T. Pigmentation of rainbow trout
with astaxanthin at different water temperatures. Aquaculture 1991;97:
203-216.
Recibido: 11/07/2003 Aceptado: 31/05/2004
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ALAN-VE ISSN 0004-0622 - Depósito Legal: pp 199602DF83
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