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Artículos Generales
¿Funciona el tejido adiposo marrón como un depósito de ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga durante el desarrollo postnatal del cerebro?
Venezuela Azavache, Carmen Cuevas y Virgilio Bosch R. Sección de Lipidología. Instituto de Medicina Experimental. Universidad Central de Venezuela. Caracas, Venezuela
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RESUMEN ¿Funciona el tejido adiposo marrón como un depósito de ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga durante el desarrollo postnatal del cerebro? Los mamíferos como el hombre y la rata, poseen durante su desarrollo postnatal temprano un tejido adiposo marrón (TAM) muy activo. En este trabajo se exploró la posibilidad de que el TAM funcione como un depósito de ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga (AGPI-CL), durante el período de máximo crecimiento postnatal del cerebro de rata. En el TAM de ratas de 1, 6, 12 y 20 días de edad analizamos la concentración de triglicéridos (TG) y la composición de ácidos grasos en los TG y fosfolípidos (FL). Además, en ratas de 6 días de edad evaluamos la capacidad del TAM para desaturar 1-14C ácido linoleico administrado por vía intraperitoneal. Los resultados mostraron un rápido incremento en la concentración de TG durante el período experimental (1,5; 40; 118; 120 mg /g de peso húmedo). El porcentaje de AGPI-CL fue mayor en las ratas de 1 y 6 días de edad que en las de 12 y 20 días (16-17% vs 5%). Por otra parte, la incorporación de 1-14C ácido linoleico fue más alta en el hígado que en el TAM, aunque la relación “productos desaturados de 1-14C ácido linoleico / 1-14C ácido linoleico” fue mayor en el TAM que en el hígado (>4), lo cual podría indicar que este tejido además de almacenar AGPI-CL los sintetiza. En resumen, nuestros resultados demuestran que el TAM es depósito importante de AGPI-CL durante el período de máximo desarrollo postnatal del cerebro.
Palabras clave: Lípidos, tejido adiposo marrón, cerebro, ácido docosahexaenico, ácido araquidónico.
SUMMARY Is brown adipose tissue a store of long chain polyunsaturated fatty acids during postnatal developing brain? Mammals along their early postnatal period develop a substantial amount of a very active brown adipose tissue (BAT). Through this work we explored the possibility that BAT may function as a long chain polyunsaturated fatty acids reservoir (LC-PUFA) during the rapid growth of brain structures. In new born rats 1, 6, 12 and 20 days old, we analyzed fatty acid percentage of triglycerides (TG) and phospholipid fractions, and the absolute amount of TG. In 6 day old rats we also evaluated the extend of further desaturation of 1-14C linoleic acid administered by intraperitoneal injection. Results demonstrated a drastic increase of TG concentration during experimental period (1,5; 40; 118; 120 mg/g wet weight) and LC-PUFA percentage was higher in “1 and 6” than “12 and 20” days old rats (16-17% vs 5%). Our results showed that BAT stored important amounts of LC-PUFA. On the other hand, 1-14C linoleic acid incorporation was higher in liver than BAT. In contrast, the desaturated products of 1-14C linoleic acid /1-14C linoleic acid ratio was greater in BAT than liver (>4). This could indicate that BAT synthesizes LC-PUFA in addition to store it. In summary we demonstrated than BAT is an important reservoir of LC-PUFA during postnatal brain growth.
Key words: Lipids, brown adipose tissue, brain, arachidonic acid, docosahexaenoic acid.
INTRODUCCION
El desarrollo normal del sistema nervioso central (SNC) requiere un
suministro adecuado de ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga (AGPI-CL),
principalmente de los ácidos araquidónico (C20:4 n-6) y docosahexaenoico
(C22:6 n-3) (1-3). Durante el desarrollo fetal se produce una transferencia neta
de AGPI-CL desde la placenta hacia el cerebro (4). En el período postnatal
estos ácidos grasos son aportados principalmente por la leche materna y por la
síntesis endógena (5,6). El hígado y el cerebro han sido los órganos más
estudiados, los resultados han revelado que la síntesis en estos órganos
inmediatamente después del nacimiento (1 a 20 días de edad) es muy baja (7,8),
aunque después de los treinta días de edad ya se ha desarrollado bien la
capacidad para la síntesis endógena (9). Estudios en otros órganos o tejidos
no se han realizado, en este sentido resulta interesante considerar la
participación del tejido adiposo marrón (TAM), dado que tanto en el hombre
como en la rata este tejido exhibe su mayor desarrollo y actividad metabólica
durante el período postnatal temprano. Además, el grado de madurez del SNC de
los mamíferos recién nacidos se puede correlacionar directamente con la
actividad metabólica del TAM (10). Este tejido tiene relaciones importantes con
el SNC: presenta una rica inervación simpática que llega a los vasos
sanguíneos y también a los adipocitos, esta última característica lo
diferencia del tejido adiposo blanco (11,12) y, las evidencias indican que
sintetiza leptina (13). En cuanto a su actividad, el TAM de ratas recién
nacidas presenta un metabolismo lipídico superior a hígado, tejido adiposo
blanco, piel y cerebro (14). La tasa de oxidación de ácidos grasos en el TAM
es elevada, pero su actividad lipolítica es aún mayor (15,16), de manera que el
excedente de ácidos grasos podría ser exportado hacia otros órganos o
tejidos. También presenta una alta actividad lipogénica (16,17). El propósito
de este trabajo fue evaluar la capacidad del TAM para almacenar AGPI-CL, durante
el período de máximo desarrollo postnatal del cerebro de rata, a través del
análisis del contenido de AGPI-CL en el TAM, y mediante el estudio del
metabolismo del 1-14Cácido linoleico, determinando su incorporación y la presencia de los productos
de su desaturación tanto en el TAM como en el hígado.
MATERIALES Y METODOS
Reactivos
Todos los solventes (metanol, etanol, cloroformo, éter etílico y éter de
petróleo) y otros reactivos fueron de grado analítico (Merck, Alemania). Se
emplearon placas de capa fina de silica gel G-60 (Merck, Alemania), los
reactivos 2,3 dibromofluoresceína; metil ésteres de ácidos grasos,
fosfatidilcolina, triestearina, fueron adquiridos a Sigma (St. Louis, USA), y el
[1-14C] ácido linoleico a
Dupon / NEN (Boston, USA).
Animales
Se utilizaron ratas lactantes de ambos sexos de la cepa Sprague Dawley, de 1, 6,
12 y 20 días de edad (entre 6 y 8 por grupo). Las madres se alimentaron con una
dieta comercial (Protinal, Valencia, Venezuela).
Extracción de los lípidos del TAM
Las ratas fueron sacrificadas por decapitación entre las 9:00 y 10:00 de la
mañana. Posteriormente se extraía de la región interescapular el TAM, se
hacía un pool hasta completar entre 0.3 - 0.4 gramos, luego se cortaban
finamente y se enjuagaban con solución fisiológica a 4o C y se homogenizaban
manualmente. Los lípidos se extrajeron siguiendo el método de Folch y Col.
(18)
Determinación de triglicéridos en los lípidos totales del TAM
La concentración de TG en el TAM fue determinada
en los lípidos totales mediante el método enzimático descrito por Carr y col.
(19). Los resultados se expresan en mg/g de peso húmedo.
Separación de fosfolípidos y
triglicéridos del TAM
Los fosfolípidos (FL) y triglicéridos (TG) del TAM, se separaron a partir de
los lípidos totales mediante cromatografía de capa de capa fina sobre placas
de sílica gel G-60, siguiendo el procedimiento descrito por Mangold (20). Para
la corrida se empleó una mezcla de éter de petróleo: éter etílico: ácido
acético en la proporción 90:10:1 (v/v/v). Las áreas correspondientes a TG y
FL se identificaron mediante el empleo de estándares.
Obtención de los metil-ésteres de los
ácidos grasos y separación por cromatografía gas-líquido
Los metil-ésteres de los ácidos grasos se
obtenían de acuerdo al método descrito por Chalvardjian (21) con ligeras
modificaciones: Los FL y TG raspados de las placas de capa fina se sometían a
una reacción de transesterificación con metanol, para ello se empleaba una
mezcla de metanol: ácido sulfúrico: tolueno y BHT al 1% como antioxidante, se
llevaban a reflujo por una hora a 80oC bajo atmósfera de N2. Luego se extraían
los metil-ésteres de los ácidos grasos con hexano, se evaporaba todo el
solvente bajo una corriente de nitrógeno, luego se resuspendían en 10-20 uL de
hexano. Para la separación de los metil-ésteres se inyectaba 1 uL, en un
cromatógrafo gas-líquido marca Hewlett Packard e integrador, ambos modelo 5880
A. Las características de la columna fueron las siguientes: columna de vidrio
de 4 mm x 183 cm, empacada con polietileno glicol adipato al 4% en peso sobre
cromosorb AW de 80 mesh. Las condiciones para la separación fueron: temperatura
del horno 200oC; temperatura del detector de llama 250oC; gas transportador
Nitrógeno, y velocidad del flujo 60cm/min.
Incorporación de 1-14C ácido linoleico en el TAM e
hígado de ratas lactantes de 6 días de edad. Separación de los productos
desaturados del ácido linoleico
A las ratas lactantes de 6 días de edad se les
administraban por vía intraperitoneal 10 μCi
de 1-14C ácido linoleico, diluidos en 50 μL
de aceite de pescado (pobre en ácido linoleico). Después de 2 y 6 horas, los
animales (6 en cada grupo) fueron sacrificados por decapitación, y luego de
obtener los hígados y TAM, se extrajeron los lípidos totales como se
describió anteriormente. Para separar el ácido 1-14C linoleico de sus
productos desaturados, primero se obtenían los metil-ésteres de los ácidos
grasos, como también se explicó, y luego éstos se separaban sobre placas de
silica gel G-60 impregnadas en nitrato de plata al 10%. Como solvente se empleó
una mezcla de hexano: dietiléter en proporción 85:15 (v/v). Para visualizar el
ácido linoleico y sus productos, la placa se rociaba con 2´
7´dibromofluoresceína al 1% en etanol, y las manchas se visualizaban bajo luz
UV. La identificación se realizó mediante el empleo de estándares. Las zonas
identificadas se raspaban y se colocaban en viales que contenían 10 mL de una
solución de PPO / POPOP en tolueno, y la radioactividad se midió en un
contador 1219 Rack Beta LKB (Suecia).
Análisis estadístico
Se emplearon las pruebas de ANOVA de una
vía, prueba de Tuckey y t de Student.
RESULTADOS
En la Tabla 1, se presentan el peso del TAM de las
ratas durante los primeros 20 días de la vida postnatal. En la primera semana
el TAM representaba cerca del 1% del peso corporal y hacia el final del estudio
un 0,5%. A simple vista se pudo observar que hasta el día doce, el TAM de las
ratas era de color oscuro y muy bien delimitado, después se tornaba pálido y
los límites se hacían difusos. La concentración de triglicéridos antes del
inicio de la lactancia fue escasa (1.5 mg/g de peso húmedo), pero después
comenzó una rápida acumulación de éstos, a los 12 días de edad la
concentración ya sobrepasaba los 100 mg/g de peso húmedo. En la Tabla 2 se
presenta la distribución porcentual de AG en los TG del TAM. Se puede apreciar
que desde el nacimiento hasta los 6 días de edad, las proporciones de ácidos
grasos saturados (AGS), monoinsaturados (AGMI) y poliinsaturados (AGPI) fueron
similares. A los 6 días de edad, los AGPI-CL representaban más del 21% del
total de ácidos grasos, los más abundantes fueron el 20:3n-6 y el 20:4 n-6
(9.36 y 6.14 % respectivamente), y en menor proporción el 22:5n-3 (2,16%) y el
22:6n-3 (1,99%). Después de este período, la composición cambió
significativamente, el porcentaje de AGS aumentó por encima del 45% y ocurrió
un descenso en los AGPI, debido principalmente a la disminución del C20:3 n-6 y
C20:4 n-6 (p<0.05) (porcentajes menores al 2%). La Tabla 3 muestra la
composición de AG en los fosfolípidos del TAM; el porcentaje de AGS fue más o
menos constante, alrededor del 33%, y sólo estaban presentes el C16:0 y el
C18:0, este último fue el más abundante después del inicio de la lactancia.
El porcentaje de los AGMI descendió considerablemente después del primer día,
de 20% a 10% aproximadamente (p<0.05), lo que fue contrarrestado por un
aumento de los AGPI n-6, principalmente del C20:3 n-6 y C20:4 n-6 (p<0.05).
También se observó una disminución significativa del C22:6 n-3, después de
la primera semana.
TABLA 1
Pesos: corporal, del tejido adiposo marrón (TAM) y del hígado;
y concentración de triglicéridos en el tejido adiposo marrón de ratas
lactantes
|
| Edad |
Peso corporal |
TAM |
Hígado |
TG-TA |
(días)
|
( g)
|
( g)
|
(g)
|
mg/g peso húmedo
|
|
| 1 |
7.4 ± 0.5 |
0.08 ± 0.01 |
0.17 ± 0.03 |
1.5 ± 0.3 |
| 6 |
11.0 ± 1.0 |
0.08 ± 0.03 |
0.23 ± 0.03 |
40 ± 9.0 |
| 12 |
24.6 ± 0.7 |
0.11 ± 0.05 |
0.68 ± 0.05 |
118 ± 11 |
| 20 |
30.0 ± 1.5 |
0.19 ± 0.03 |
0.83 ± 0.13 |
114 ± 16 |
|
| Cada punto representa el promedio ±
DS de 6-8 ratas. |
TABLA 2
Porcentaje de ácidos grasos en los triglicéridos totales
del tejido adiposo marrón de ratas lactantes
|
| Edad |
% Ácido
graso |
1 Día |
6 Días |
12 Días |
20 Días |
|
| 10:0 |
0.88 ± 0.11 |
tr |
tr |
0.95 ± 0.30 |
| 12:0 |
0.62 ± 0.13 a |
0.68 ± 0.11 a |
5.50 ± 0.33 b |
6.21 ± 0.50 b |
| 14:0 |
2.04 ± 0.13 a |
3.27 ± 0.37 a |
8.95 ± 0.37 b |
8.02 ± 0.13 b |
| 16:0 |
16.53 ± 1.10 a |
18.43 ± 0.51 a |
23.70 ± 0.71 b |
21.54 ± 0.26 b |
| 18:0 |
5.83 ± 0.28 |
7.91 ± 0.44 |
4.56 ± 0.19 |
6.17 ± 0.11 |
| Ó AGS |
25.43 ± 3.62 a |
30.28 ± 1.31 a |
44.49 ± 1.35 b |
42.89 ± 1.20 b |
| 16:1 |
3.79 ± 0.60 a |
2.18 ± 0.04 a |
1.70 ± 0.13 |
1.89 ± 0.03 |
| 18:1 |
20.66 ± 1.88 a |
18.62 ± 0.31 a |
24.91 ± 1.28 b |
25.11 ± 0.54 b |
| Ó AGMI |
24.4 5± 3.73a |
21.16 ± 1.08 a |
28.05 ± 0.88 b |
26.99 ± 1.05 |
| 18:2 |
13.61 ± 1.27 |
21.82 ± 0.48 |
18.48 ± 0.56 |
19.98 ± 0.27 |
| 18:3n-6 |
2.88 ± 0.67 |
0.97 ± 0.04 |
0.48 ± 0.03 |
0.40 ± 0.03 |
| 18:3n-3 |
2.31 ± 0.16 |
tr |
0.38 ± 0.06 |
0.76 ± 0.07 |
| 20:3n-6 |
5.26 ± 1.24 a |
9.36 ± 0.08 a |
1.06 ± 0.06 b |
0.70 ± 0.10 b |
| 20:4n-6 |
4.17 ± 0.27 a |
6.14 ± 0.17 a |
1.67 ± 0.20 b |
0.92 ± 0.06 b |
| 22:4n-6 |
1.26 ± 0.27 a |
2.31 ± 0.1 a |
0.63 ± 0.03 b |
0.40 ± 0.02 b |
| TR31' |
1.09 ± 0.33 |
tr |
tr |
0.18 ± 0.01 |
| 22:5n-3 |
1.48 ± 0.29 a |
2.16 ± 0.36 a |
0.72 ± 0.17 b |
0.95 ± 0.02 b |
| 22:6n-3 |
1.91± 0.28 a |
1.99 ± 0.03 a |
1.14 ± 0.19 b |
1.37 ± 0.08 b |
| Ó AGPI |
34.77 ± 4.57 a |
42.31 ± 2.16 a |
23.92 ± 0.94 b |
26.65 ± 1.08 b |
| Ó AGPI-CL |
14.27 ± 1.47 a |
17.66 ± 2.65 a |
4.31 ± 0.36 b |
4.52 ± 0.22 b |
|
Cada valor representa el promedio ± error estándar, n = 5 para cada grupo;
Los valores con letras distintas son estadísticamente significativas (P< 0.05);
TR31´ representa un ácido graso no identificado cuyo tiempo de retención fue de 31
minutos
tr = traza < 0.1%; AGPI-CL: ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga. |
TABLA 3
Composición porcentual de ácidos grasos en los fosfolípidos
totales del tejido adiposo marrón de ratas lactantes
|
| Edad |
| % de AG
|
1 día
|
6 días
|
12 días
|
20 días
|
|
| 16:0 |
18.20 ± 0.33 a |
13.97 ± 0.75 b |
14.31 ± 0.10 b |
12.09 ± 0.64 b |
| 18:0 |
13.98 ± 0.17 a |
19.18 ± 1.06 b |
20.07 ± 0.30 b |
20.62 ± 0.59 b |
| Ó AGS |
32.18 ± 0.46 |
33.16 ± 1.81 |
34.38 ± 0.02 |
32.72 ± 0.08 |
| 16:1 |
2.76 ± 0.06 a |
1.03 ± 0.21 b |
tr |
0.79 ± 0.09 b |
| 18:1 |
17.54 ± 0.41 a |
9.58 ± 0.50 b |
9.81 ± 0.35 b |
11.52 ± 0.48 b |
| Ó AGMI |
20.34 ± 0.75 a |
10.26 ± 0.45 b |
10.16 ± 0.29 b |
12.32 ± 0.51 b |
| 18:2 |
10.99 ± 0.22 a |
10.97 ± 0.55 a |
13.64 ± 0.21 a |
19.49 ± 0.42 b |
| 18:3n-6 |
0.45 ± 0.17 |
1.43 ± 0.03 |
tr |
tr |
| 18:3n-3 |
0.27 ± 0.02 |
tr |
tr |
tr |
| 20:3n-6 |
2.59 ± 0.30 a |
6.90 ± 1.02 b |
6.39 ± 1.14 b |
5.31 ± 1.55 b |
| 20:4n-6 |
16.30 ± 0.51 a |
20.17 ± 0.61 b |
22.13 ± 0.50 b b |
19.05 ± 0.51 b |
| 22:4n-6 |
1.20 ± 0.04 |
tr |
1.37 ± 0.08 |
tr |
| TR31' |
1.10 ± 0.04 |
1.27 ± 0.17 |
0.59 ± 0.07 |
tr |
| 22:5n-3 |
0.93 ± 0.03 |
1.86 ± 0.31 |
1.67 ± 0.11 |
1.75 ± 0.20 |
| 22:6n-3 |
8.45 ± 0.30 a |
5.48 ± 0.20 b |
4.69 ± 0.44 b b |
5.71 ± 0.18 b |
| Ó AGPI |
42.21 ± 0.34 |
47.65 ± 1.96 |
46.85 ± 3.61 |
45.31 ± 5.38 |
| Ó AGPI-CL |
28.88 ± 1.00 a |
35.52 ± 1.76 b |
35.78 ± 1.4 b |
32.60 ± 1.27 b |
|
Los valores representan el promedio de al menos 5 determinaciones ± ESM.
Las diferencias significativas se representan con distintos superíndices (P< 0.05).
TR31´ representa un ácido graso no identificado cuyo tiempo de retención fue de 31 minutos; tr = traza < 0.1 %; AGPI-CL: ácidos grasos poliinsaturados de cadena larga. |
La Tabla 4 muestra los resultados de la incorporación de
1-14C ácido linoleico y los productos desaturados de éste, en el hígado y en
el TAM de las ratas de 6 días de edad. Se aprecia que la incorporación de
1-14C ácido linoleico en el hígado fue aproximadamente 10 veces mayor que en
el TAM, sin embargo la relación en d.p.m entre los productos desaturados de
1-14C ácido linoleico / 1-14C ácido linoleico (PD/AL) fue más alta en el TAM
que en el hígado, tanto a las 2 horas como a las 6 horas después de la
inyección intraperitoneal.
TABLA 4
Incorporación de [1-14C] ácido linoleico y sus productos desaturados
en el tejido adiposo marrón e hígado de ratas de seis días de edad
|
|
|
TAM |
Hígado |
|
|
AL(dpm)
|
PD (dpm)
|
PD/AL
|
AL (dpm)
|
PD (dpm)
|
PD/AL
|
|
| 2 horas |
4658 ± 1362 |
2.272 ± 892 |
0.48 |
22.236 ± 13.900 |
2183 ± 788 |
0.10 |
| 6 horas |
2682 ± 701 |
1616 ± 474 |
0.60 |
8.863 ± 3883 |
1669 ± 311 |
0.18 |
|
AL: ácido linoleico; PD: productos desaturados del ácidolinoleico; PD/AL relación entre productos desaturados del ácido linoleico y ácido linoleico.
La radioactividad se expresa como dpm/g de peso húmedo.
Los valores representan el promedio ± DS de seis determinaciones independientes. |
DISCUSION
La baja concentración de TG en el TAM
(1.5 ± 0.3 mg/g peso húmedo), observada en las ratas de 1 día de edad, indica
que este tejido no puede representar un reservorio importante de ácidos grasos
durante el desarrollo prenatal. Sin embargo, después del nacimiento, la rápida
acumulación de TG que se inició con la lactancia, así como la alta
proporción de AGPI-CL que se observó a los 6 días de edad (40 mg de TG/g de
peso húmedo y aproximadamente 23% de AGPI-CL) indican que durante la primera
semana el TAM acumuló una considerable cantidad de AGPI-CL, especialmente de la
familia n-6 y en menor grado de la n-3, y aunque después de este período la
proporción de todos los AGPI-CL disminuyó a un 5%, se puede estimar que la
cantidad total almacenada fue siempre elevada, ya que la concentración de TG
casi se triplicó entre los días 6 y 12 de edad y en adelante permaneció alta
(más de 100 mg de TG/g de peso húmedo; Tabla 1). Se puede considerar entonces
que el TAM en las ratas recién nacidas, además de cumplir con su función
termogénica, podría funcionar como un importante depósito de AGPI-CL, los
cuales podrían ser suministrados a los órganos y tejidos que se están
desarrollando rápidamente en ese período, especialmente al cerebro por
presentar la mayor tasa de crecimiento y por el alto requerimiento que tiene de
C20:4n-6 y C22:6n-3. Este planteamiento se fundamenta también, en observaciones
realizadas por otros investigadores, por ejemplo: El TAM exporta diversas
sustancias, entre estas ácidos grasos (22). La exportación de ácidos grasos
puede ser significativa en el TAM, ya que su actividad lipolítica supera la
capacidad oxidativa de ácidos grasos (15,16). Además, estudios in vitro han
demostrado que el grado de movilización de los ácidos grasos C20:5 n-3;
C20:4n-6; C20:3n-6 y C22:6n-3 es más alta que la observada para C16:0 y
C18:2n-6, a pesar de que éstos son más abundantes que los primeros (23).
Nuestro planteamiento es similar al
propuesto por Speake y colaboradores (23), quienes observaron que en el tejido
adiposo de embriones de pollo ocurría una acumulación de AGPI-CL, y que la
concentración de éstos disminuía durante el crecimiento de los tejidos
neurales. En base a estos resultados, propusieron que el tejido adiposo de los
embriones de pollo posiblemente funcionan como un intermediario en la
transferencia de los AGPI-CL desde la yema hacia los tejidos neurales.
Por otra parte, Lefkowitz y col. (9) hacen
una observación importante sobre la posible presencia de depósitos de AGPI-CL
durante el período de rápido crecimiento del cerebro en la vida postnatal de
la rata. Ellos suministraron d5-C18:3 n-3, como única fuente de
AGPIn-3, a un grupo de ratas desde los 7
hasta los 28 días de edad. Al examinar la composición de AG del cerebro al
final del período experimental, encontraron que el 40% de C22:6 n-3 acumulado
estaba sin marcar con deuterio, es decir, que durante la primera semana de
nacidas, las ratas habían almacenado una cantidad importante de C22:6 n-3. En
este sentido, nuestros resultados evidencian que los TG del TAM representan un
depósito cuantitativamente importante de AGPI-CL, especialmente de C20:4n-6, de
su precursor C20:3 n-6 y, en menor proporción de C22:5 n-3 y C22:6 n-3.
En los FL también se observó un
enriquecimiento de AGPI-CL n-6 con el inicio de la lactancia (en un 10% o más)
y, en adelante la composición de éstos no cambió significativamente. Es
decir, en los FL a diferencia de Los TG no se apreció un cambio acentuado en la
composición de AG después de la primera semana de edad, probablemente por la
función estructural y funcional que cumplen estos lípidos. Sin embargo, no se
descarta que durante el proceso normal de involución del TAM, que ocurre
durante el crecimiento de los mamíferos, la degradación de los FL de las
membranas mitocondriales, muy abundantes en el tejido activo (10), pueda aportar
al plasma cantidades importantes de AGPI-CL.
Por otra parte, la presencia de productos
desaturados del 1-14C ácido linoleico, tanto en el hígado como en el TAM, a
las 2 y 6 horas después de la inyección intraperitoneal de1-14C ácido
linoleico, indican que en algún grado ocurrió síntesis de AGPI-CL en las
ratas de 6 días de edad (edad en la cual se observó la mayor concentración de
AGPI-CL en TG). Aunque la incorporación total de 1-14C ácido linoleico fue
mayor en el hígado que en el TAM, es significativo resaltar que la relación en
d.p.m. entre "los productos desaturados del 1-14C ácido linoleico / 1-14C
ácido linoleico" (PD/AL) fue aproximadamente cuatro veces mayor en el TAM
que en el hígado (Tabla 4). Estos resultados, aunque muy preliminares, podría
indicar que en el TAM se sintetizan AGPI-CL con mayor eficiencia que en el
hígado.
En conclusión, nuestros resultados revelan que el TAM es
un depósito cuantitativamente importante de AGPI-CL durante los primeros días
de la vida postnatal de la rata. Es probable que estos ácidos grasos provengan
principalmente de la leche materna y, en alguna extensión de la síntesis
endógena. Tomando en conjunto, nuestros resultados y los de otros
investigadores (9,15,16,22,23), nosotros proponemos que el TAM tiene un alto
potencial para contribuir con el mantenimiento de la alta concentración de
AGPI-CL encontrada en el plasma de ratas recién nacidas (24), durante el
período de máximo crecimiento postnatal del cerebro.
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Recibido: 28/03/2006 Aceptado: 16/10/2006
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